| 包装 | 价格(元) |
| 1ml | 电议 |
| 5x1ml | 电议 |
| 20x1ml | 电议 |
| 50x1ml | 电议 |
| 100x1ml | 电议 |
Taq DNA聚合酶具有5'→3'DNA聚合酶和微弱的5'→3'核酸外切酶的能力，但没有3'→5'外切酶的能力，这意味着在3'末端会出现一个dA突出。使用该特性，它可被用于TA克隆。在PCR反应中，Taq DNA聚合酶的延伸率约为1-2kb / min，这取决于基因的复杂性。对于大多数模板，使用1kb / min。
反应体系只需要添加引物，模板和ddH2O，大幅度简化了实验步骤，减少了个人错误并提高了结果的可重复性。
该Master Mix含有染料，这意味着它可以在扩增后直接进行电泳，无需添加上样缓冲液。如果需要对PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳，可以使用我们的产品SYBR Safe DNA Gel Stain（目录号：A8743）加入胶中。
| Component | Size |
| 2X Taq PCR Master Mix(with dye) | |
| 1 mL | |
| 1 mL x 5 | |
| 1 mL x 20 | |
| 1 mL x 50 | |
| 1 mL x 100 | |
| 将2X Master Mix储存在-20°C。 | |
用于一般PCR或其他实验的理想产品
快速简单的即用型PCR预混物
每个反应成本更低
已含染料
| 常见问题 | 可能原因 | 解决方案 |
| PCR产物没有或非常少 | ||
| 引物设计不佳 | 选择适当的引物设计软件进行引物设计 | |
| 待扩增片段GC含量偏高或片段长 | 推荐使用其它更适合的DNA聚合酶 | |
| 退火温度不佳；延伸时间太短；循环数太少 | 优化PCR实验条件 | |
| 模板浓度过低；实验样品 DNA损伤或降解 | 适当加大模板量；重新制备模板 | |
| 模板质量太差 | 用适当的DNA纯化方法例如柱纯化等纯化模板DNA | |
| 引物浓度过低；Mg2+浓度未优化 | 适当调整引物浓度及Mg2+浓度 | |
| 扩增特异性差，非特异性扩增 | ||
| 引物设计不完善 | 引物与靶序列有非特异性互补或自身聚合成二聚体，可降低引物浓度，必要时重新设计引物 | |
| 模板质量太差 | 模板不纯，被污染，需重新制备模板； 模板降解或过量，通过电泳检查模板完整性及浓度，必要时重新纯化模板 | |
| PCR 循环条件未优化 | 如果出现比目的条带小的杂带，可通过提高退火温度，降低循环数调整；如果出现比目的条带大的杂带，可缩短延伸时间、降低循环数 | |
| 空白对照出现扩增产物 | ||
| 引物设计不合理 | 扩增序列与非目的扩增序列有同源性，PCR也可以扩增出非靶序列的序列，重新设计引物 | |
| 携带污染 | 若扩增产物条带大小与目的条带一致，说明有污染；更换新的Mix、水或引物重复实验；反应体系在超净工作台内配制，减少气溶胶污染 | |
| 扩增的条带亮度不够 | ||
| 引物降解 | 检查人工合成的引物是否因存储条件不当而降解，必要可更换引物 | |
| 模板质量 | 首先确认模板的质量，长期放置、反复冻融会导致模板断裂、开环或降解，应使用新鲜制备的DNA双链作为模板；如果模板没有了，可用首次扩增产物按倍比稀释后作为模板进行二次扩增 | |
| 酶浓度 | 可适当提高酶的使用量 | |
| PCR 循环条件未优化 | 可尝试使用Touch Down程序；延长延伸时间，提高循环数 |
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